Veuillez utiliser cette adresse pour citer ce document : http://dspace.univ-bouira.dz:8080/jspui/handle/123456789/2938
Affichage complet
Élément Dublin CoreValeurLangue
dc.contributor.authorMESRANE, Karima-
dc.date.accessioned2019-07-01T09:29:33Z-
dc.date.available2019-07-01T09:29:33Z-
dc.date.issued2018-07-01-
dc.identifier.citationUniversité de Bouiraen_US
dc.identifier.urihttp://193.194.80.38:8080/jspui/handle/123456789/2938-
dc.descriptionOMMAIRE Liste des abréviations Liste des tableaux Listes des figures Introduction Synthèse Bibliographique 1. Présentation générale sur les polyphénols…………………………………4 1.1 Définition………………………………………………………………………..…4 1.2. Classification des polyphénols……………………………………………….……4 1.2.1. Polyphénols simples………………………………………………….….5 1.2.2. Polyphénols complexes (tanins)…………………………………………6 2. Généralités sur la plante étudiée (Ziziphus lotus ) ...........................…...7 2.1. Etude ethnobotanique ………………………..………………………………...…7 2.2. Répartition géographique…………………………………………………….……8 2.3. Compositions biochimiques… ……………………………………………...…….9 2.4. Activités biologiques et thérapeutiques de Z. lotus …………………………….……10 3. Les techniques d’extractions des polyphénols………………………….…11 3.1. Méthodes conventionnelles …………………………………………………..… 11 3.2. Nouvelles méthodes ...……………………………………………………..……12 4. Méthodologie des plans d’expériences………………………………...……14 4.1. Définition des plans d’expériences………………………………………………14 4.2. Formulation du problème………………………………………..……………… 15 4.3. Objectif d’utilisation …………………………………………………….…... 15 4.4. Types des plans d’expériences…………………………………..………………16 4.5. Domaine d’utilisation………………………………………………….…………16 4.6. Stratégie de plan d’expérience………………………………………...…………16 Matériel et méthodes 1. Lieu de stage………………………………………………………………..18 2. Matériel ……………………………………………………..………...………………18 2.1. Matériel végétal…………………………………………………….…….………18 2.2. Préparation et caractérisation du matériel végétal……………...……………...…18 2.3. Détermination de taux d’humidité ……………………………...………..………18 3. Méthode……………………………………………………………………..19 3.1. L’extraction conventionnelle par solvant………………………………………...19 3.2. L’extraction assistée par micro-onde ...…………………………………...……..19 3.2.1. Mécanisme d’action d’un micro-onde………………………………….19 3.2.2. La méthode d’extraction………………………………………………..20 3.3. L’extraction assistée par ultrason …………………...……........……………….. 20 3.3.1. Mécanisme d’action d’ultrasons……………………………………….20 3.3.2. La méthode d’extraction……………………………………………….21 4. Optimisation des conditions d’extraction par la méthodologie des plans d’expériences……………………………………………………………………….……..21 4.1. Description de l’étude …….…………………………………..………………... 21 4.2. Objectif de l’étude ………………………………………..………………….… 22 4. 3. Réponses …………………………….………………...............……….………..22 4..4. Facteurs……………………………..…………………………………...………22 4.5. Plan de Plackett et Burman……………….....………………...……...……….…22 4.6. Plan fractionnaire …………………..……….………………..………………..24 5. Dosage photochimique………………………………………………...…26 5.1. Détermination de la concentration en composés phénoliques totaux…………....26 5.2. Détermination de la teneur des flavonoïdes …………...………………………27 5.3. Détermination de l’indice de phénols …………………………………………27 5.4. Evaluation de l’activité antioxydante des extraits………………….………...….27 5.5. Analyse statistique………………………………………………………………28 Résultats et discussion 1. Le taux d’humidité ……………………………………………………………..29 2. Résultats du plan expérimental Plackett et Burman…………...……29 2.1. Analyse des résultats………………………………………………………..……30 2.2. Etude des effets des facteurs sur le rendement d’extraction les réponses……..31 2.3. Etude de la corrélation ………………………………………………. ………. 35 3. La modélisation du plan fractionnaire 25-1 ...……………………..…. 36 3.1. Les composantes des contrastes……………………………….…………………36 3.2. Estimation des paramètres de calcul………………………..……………………38 4. Résultats du plan complémentaire……………………………...……39 4.1. Interprétation des résultats des calcules………………………………………….40 4.2. Conclusion de l’étude ……………………………………………………………42 5. Validation expérimentale …………………………...………………….43 6. Comparaison entre les trois techniques d’extraction (ultrason, micro-onde et macération avec agitation)………………………...…………43 Conclusion………………………………………………….………………45 Références bibliographiques Annexesen_US
dc.description.abstractLes extraits naturels issus des végétaux contiennent une variété demolécules biologiquement actives. Dans ce contexte, ce travail consiste, à extraire les composés phénoliques du fruit de Zizyphus lotus issue de la région Djelfaainsi que l’évaluation de son activitéantioxydante par le test de DPPH:Ce fruit a été soumis à l’extraction solide-liquide assistée par ultrasonen utilisant l’eau comme solvant avec une optimisation des conditions d’extraction (solvant, diamètre, ratio, température, vitesse, pH et le temps), par l’application de la méthodologie des plans d’expériences. En effet, ces plans ont permet de sélectionner les paramètres influents l’opération qui sont le ratio solide/ liquide (1/20), les pulsations ultrasonique et le diamètre des particules 500μm. le dosage des polyphénols totaux,flavonoïdes et DPPH a été fait par la méthode colorimétrique.Les résultats obtenus dans les conditions optimales sont 3219.21±117.11, 239.36±5.23 et 63.64±2.59 respectivement. Ces résultats ont révélé qu’ils sont meilleurs que sont obtenus par l’extraction par microonde et agitation.en_US
dc.language.isofren_US
dc.publisherUniversité de Bouiraen_US
dc.subjectZizyphus lotus ; composés phénoliques ; méthodes d’extraction ; activité antioxydante ; Ultrasonsen_US
dc.titleOptimisation de l’extraction assistée par l’ultrason des composés phénoliques du jujubier Ziziphus lotusen_US
dc.typeThesisen_US
Collection(s) :Mémoires Master

Fichier(s) constituant ce document :
Fichier Description TailleFormat 
Optimisation de l’extraction assistée par l’ultrason des composés phénoliques du jujubier Ziziphus lotus.pdf1,22 MBAdobe PDFVoir/Ouvrir


Tous les documents dans DSpace sont protégés par copyright, avec tous droits réservés.