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http://dspace.univ-bouira.dz:8080/jspui/handle/123456789/808| Title: | CONTRIBUTION A L’EVALUATION DE L’EFFET TOXIQUE ET THERAPEUTIQUE DES PLANTES MEDICINALES:JUNIPERUS PHOENICEA, OLEA EUROPAEA ET URTICA DIOICA |
| Authors: | BRAHIMI, Souaad |
| Keywords: | Escherichia coli, Salmonella, sp, plantes médicinales, activité antioxydante, activité antibactérienne, effet toxique, CMI, diagnostique |
| Issue Date: | 7-Jun-2017 |
| Publisher: | Université de Bouira |
| Citation: | Université de Bouira |
| Abstract: | Escherichia coli et Salmonella, sp, sont souvent liées à des pathologies humaines et présentent une résistance à un large spectre d’antibiotiques. Les plantes médicinales : Juniperus phoenicea, L, Olea europaea, L, Urtica dioica, L sont très utilisées et spécifiquement impliquées dans la phytothérapie traditionnelle en Algérie. L’objectif de ce travail est la mise en évidence de pouvoir thérapeutique de ces plantes dans le traitement des maladies infectieuses d’origine bactérienne à base de leurs extraits. Pour cela, l’étude qualitative et quantitative des extraits montre la richesse des plantes en composés phénoliques et notamment en flavonoïdes. L’évaluation de l’activité antioxydante par la méthode DPPH des extraits méthanoliques des plantes montre que l’extrait de Juniperus phoenicea possède un pouvoir antioxydant puissant par rapport les deux autres extraits. L’activité antibactérienne des extraits des plantes par la méthode de culture en milieu solide (MH) est importante vis-à-vis les espèces bactériennes Escherichia coli (ATCC25922) et Salmonella, sp. Les concentrations CMI déterminés in vitro pour ces extraits des plantes sur Escherichia coli (ATCC25922) ont permis l’évaluation de la toxicité aigue in vivo chez les rats Hamsters par l’administration de la dose CMI×4 par gavage orale. Le diagnostic anatomopathologique des coupes histologiques du rein, foie et l’intestin grêle chez les rats Hamsters montre l’absence d’impact pathologique ou des altérations morphologiques sur les tissus, à l’exception des congestions vasculaires remarquables sur le foie et le rein. Cette étude in vitro et in vivo suggère que ces extraits des plantes médicinales constituent des alternatives à certains additifs synthétiques qui sont utilisés dans le traitement des infections entériques liées à Escherichia coli. |
| Description: | Table des matières Liste des abréviations Liste des figures Liste des tableaux Introduction Etude bibliographique Chapitre I. Les Pathologies humaines liées a E. coli et Salmonella I.1Escherichia coli (E. coli)…………………………………………………………….. 05 I. 1.1 Définition et habitat……………………………………………………………….. 05 I. 1.2 Classification……………………………………………………………………... .. 06 I. 1.3 Commensalité et pathogénicité d’E. coli………………………………………… .. 06 I.1.4 Physiopathologie et symptomatologie d’E. coli……………………………………. 08 I.1.5 Les infections extra-intestinales……………………………………………………. 10 I.1.6 Diagnostic…………………………………………………………………………. 11 I.1.7 Les moyens thérapeutiques…………………………………………………………. 11 I.2 Salmonella…………………………………………………………………………...... 12 I.2.1 Définition et habitat…………………………………………………………………. 12 I.2.2 Classification………………………………………………………………………... 13 I.2.3 Commensalité et pathogénicité de salmonella………………………………………. 14 I.2.4 Physiopathologie et symptomatologie de Salmonella……………………………. .. 15 I.2.5 Toxi-infections alimentaires collectives (TIAC)………………………………... … 19 I.2.6 Les infections extra-intestinales…………………………………………………... .. 19 I.2.7 Diagnostic……………………………………………………………………….. .. 19 I.2.8 Les moyens thérapeutiques…………………………………………………………. 19 Chapitre II. Pouvoir thérapeutique des plantes médicinales II.1 Les plantes médicinales……………………………………………………………… 22 II.2 Les principaux composés actifs des plantes médicinales…………………………. … 22 II.2.1Les terpénoïdes et stéroïdes ………………………………………………………… 24 II.2.2 Les alcaloïdes……………………………………………………………………. ... 25 II.2.3 Les polyphénols………………………………………………………………… …. 25 II.2.4 Les glycosides…………………………………………………………………… .. 28 II.3 Monographie des plantes étudiées………………………………………………… … 29 II.3.1 Juniperus phoenicea L……………………………………………………………... 29 II.3.1.1 Habitat……………………………………………………………………………. 29 II.3.1.2 Description botanique………………………………………………………… … 29 II.3.1.3 Classification botanique……………………………………………………….. ... 30 II.3.1.4 Composition chimique………………………………………………………… ... 31 II.3.1.5 Usage thérapeutiques…………………………………………………………... .. 31 II.3.1.6 Toxicité de la plante……………………………………………………………. .. 31 II.3.2 Olea europaea ………………………………………………………………….... 32 II.3.2.1 Habitat……………………………………………………………………………. 32 II.3.2.2 Description botanique…………………………………………………………. … 32 II.3.2.3 Classification botanique……………………………………………………….. ... 33 II.3.2.4 Composition chimique………………………………………………………… ... 33 II.3.2.5 Usages thérapeutiques…………………………………………………………. .. 33 II.3.2.6 Toxicité de la plante……………………………………………………………… 34 II.3.3 Urtica dioica …………………………………………………………………......... 35 II.3.3.1 Habitat……………………………………………………………………………. 35 II.3.3.2 Description botanique…………………………………………………………. … 35 II.3.3. 3Classification botanique……………………………………………………….. ... 36 II.3.3.4 Composition chimique………………………………………………………….. 37 II.3.3.5 Usages thérapeutiques…………………………………………………………. . 37 II.3.3.6 Toxicité de la plante…………………………………………………………… . 38 Partie expérimentale Chapitre III. Matériels et méthodes III.1Matière végétale…………………………………………………………………… .. 40 III.1.2 Méthode d’extraction par Soxlet…………………………………………………. 40 III.1.3 Rendement de l’extraction………………………………………………………… 43 III.2 Analyse qualitative………………………………………………………………... .. 43 III.2.1Criblage phytochimique……………………………………………………………. 43 III.2.2Chromatographie sur couche mince CCM………………………………………… 44 III.3 Analyse quantitative………………………………………………………………. .. 46 III.3.1 Dosage des polyphénols totaux (réactif de Folin Ciocalteu)……………………… 46 III.3.2 Dosage des flavonoïdes totaux…………………………………………………… 47 III.4 Etude des activités biologiques des plantes……………………………………….. .. 47 III.4.1 Activité antioxydante……………………………………………………………. .. 47 III.4.2 Activité antibactérienne…………………………………………………………… 49 III.4.2.1 Matériel biologique……………………………………………………………… 49 III.4.2.2 Méthode de culture en milieu solide Muller Hinton (MH)…………………….. 49 III.5 Evaluation de la toxicité aigue des extraits des plantes sur des rats Hamsters….. … 51 III.5 .1Matériel animale…………………………………………………………………… 51 III.5 .2 Méthode…………………………………………………………………………… 51 III.5 .2.1 Observation clinique…………………………………………………………. ... 52 III.5.3 Evaluation in vivo de l’effet de la CMI sur les organes des rats Hamsters………. 52 III.5.3.1Technique anatomopathologique……………………………………………… ... 52 Chapitre IV. Résultats et discussions IV. 1 Rendement d’extraction des plantes……………………………………………….. 56 IV.2Dosage qualitative…………………………………………………………………. ... 57 IV.2.1Criblage phytochimique………………………………………………………… … 57 IV.2.2Chromatographie sur couche mince CCM……………………………………… … 58 IV.3 Dosage quantitative………………………………………………………………. … 62 IV.3 .1 Dosage des phénols totaux ………………………………………………………. 62 IV.3 .2 Dosages des flavonoïdes totaux…………………………………………………. 63 IV.4 Etude des activités biologiques des plantes…………………………. ……………... 65 IV.4.1.Activité antioxydante …………………………………………………………....... 65 IV.4.1.1Méthode DPPH…………………………………………………………………... 65 IV.4.1.2 Détermination d’IC50………………………………………………………… ... 66 IV.5 Activité antibactérienne…………………………………………………………….. 69 IV.6 Evaluation de la toxicité aigue des extraits des plantes sur des rats Hamsters….. … 73 IV.6 .1Observation clinique……………………………………………………………… 73 IV.6 .2 Etude macroscopique des organes prélevés après le sacrifice des rats………. .. 73 IV.6.3 Evaluation in vivo de l’effet de la CMI ×4 sur le foie, rein et l’intestin grêle….. ... 75 IV.6.3 .1Analyse microscopique des coupes histologiques…………………………… … 75 Conclusion Références bibliographiques Résumé Abstract ملخص |
| URI: | http://193.194.80.38:8080/jspui/handle/123456789/808 |
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